¿Para qué se utiliza la cámara de cría de insectos?

La cría de insectos ha formado parte de la historia de la humanidad durante siglos. Por ejemplo, en Europa, tenemos ejemplos de sericultura —es decir, la cría de gusanos de seda— desde la Edad Media, mientras que en China, esta práctica se conoce desde hace al menos 5.000 años.

Para pruebas de baterías y almacenamiento, descubra la cámara de pruebas de baterías FDM, diseñada para realizar pruebas en condiciones controladas.

En la actualidad, la cría de insectos desempeña un papel muy importante en la investigación, y la ciencia moderna ha desarrollado herramientas cada vez más eficientes para este fin, como la cámara de cría de insectos.

Veamos en qué consiste.

¿Para qué se utiliza la cría de insectos?

Pero antes que nada: ¿qué sentido tiene criar insectos?

Tradicionalmente, la cría de insectos ha desempeñado un papel importante en la producción y el procesamiento de materias primas. Consideremos, por ejemplo, la cría de gusanos de seda para la producción de estos gusanos o la apicultura para la producción de miel. 

Sin embargo, en los últimos años, la cría de insectos también ha servido para otros fines.

La cría de insectos para consumo humano, por ejemplo, es una de las vías que se están explorando para abordar los nuevos desafíos ecológicos. Los insectos pueden servir de alimento para el ganado, las mascotas e incluso los seres humanos.

Finalmente, la cría de insectos también sirve para la investigación científica. Algunos insectos pequeños son ideales para estudiar el genoma humano. Entre ellos se encuentra la Drosophila melanogaster, también conocida como mosca de la fruta. Su genoma es lo suficientemente similar al nuestro como para que su secuenciación sea útil para comprender las funciones de cada gen y proteína. Ya hemos hablado de esto aquí.

Cámara de crecimiento

Descubre las últimas novedades de las cámaras de crecimiento FDM.
Más información.

Cómo funciona la cámara de cría de insectos

Hemos visto que la cría de insectos existe desde los albores de la civilización humana. Incluso hoy en día, los métodos tradicionales se utilizan ampliamente en todo el mundo para cultivos intensivos.

Sin embargo, especialmente con fines de investigación, puede resultar útil criar insectos utilizando nuevas tecnologías que garanticen precisión y fiabilidad y que no requieran grandes espacios naturales.

eso están las cámaras de cría de insectos.

Las cámaras de cría de insectos son instrumentos de laboratorio diseñados específicamente para la cría de insectos pequeños, pero también de plantas, cultivos bacterianos y microorganismos en general.

La cámara de cría de insectos puede tener diversas dimensiones dependiendo del uso que queramos darle, pero algunas características son necesarias para su funcionamiento.

En primer lugar, debe ser un entorno aislado del exterior. Las cámaras de cría de insectos forman parte de la categoría más amplia de cámaras climáticas, es decir, cámaras en las que es posible crear condiciones ambientales extremadamente precisas que, en este caso, son las favorables para la cría de insectos.

Por lo tanto, una cámara de cría de insectos debe contar con un sistema para regular tres parámetros ambientales fundamentales: temperatura, humedad relativa e iluminación. 

Cada uno de estos elementos es esencial para la reproducción de diversas especies de insectos, incluidas las moscas de la fruta mencionadas anteriormente.

¿No encuentras la camara perfecta para tus ensayos?

Crea tu entorno directamente en línea, según tus necesidades específicas.
Descubre más.

La cámara de cría de insectos FDM

Durante más de 70 años, FDM – Environmental Makers ha diseñado cámaras climáticas para la investigación científica y la seguridad de productos y materiales.

Nuestras cámaras de cría de insectos, también conocidas como cámaras de crecimiento o cámaras de iluminación, están disponibles en varios modelos para satisfacer todas las necesidades. Cada cámara de cría de insectos FDM cuenta con controladores de temperatura y humedad relativa de alta precisión y diversos sistemas de iluminación para diferentes propósitos. Estas lámparas de cría de insectos se conocen como BioLamp.

Para cualquier pregunta o inquietud adicional, no dude en contactarnos.

¿Necesitas una cotización o tienes preguntas sobre el producto?

Contáctenos para obtener más información sobre este producto.
Contáctenos.

Normas de referencia

• EPA OCSPP 712-C-96-280 — Directrices para pruebas de propiedades del producto: Insectos de prueba, métodos de referencia de la EPA para la cría y exposición de insectos.
• OECD 213 — Abejas melíferas: Prueba de toxicidad oral aguda, protocolo internacional para la toxicidad aguda en Apis mellifera.
• OECD 237 — Ensayo de toxicidad larvaria de abeja melífera (Apis mellifera), método de exposición única crónica.
• ASTM E1963 — Guía estándar para la realización de estudios de disipación en campo terrestre, aplicable a las evaluaciones de la eficacia de los plaguicidas.
• ISO 22030 — Calidad del suelo: Métodos biológicos, toxicidad crónica en plantas superiores y ensayos relacionados en invertebrados terrestres.
• OCDE 222 — Prueba de reproducción de lombrices de tierra (Eisenia fetida/Eisenia andrei), prueba ecotoxicológica estandarizada.

Fuentes autorizadas

• EPA – Agencia de Protección Ambiental de los Estados Unidos. Publica las Directrices de prueba OCSPP para agroquímicos y biocidas.
• Directrices de ensayo de la OCDE. Directrices internacionales de la OCDE para el ensayo de productos químicos y plaguicidas.
• IOBC-WPRS – Organización Internacional para el Control Biológico. Referencia científica para el manejo integrado de plagas y la cría de insectos beneficiosos.

Más información: Descubra nuestra cámara de pruebas de CO2 con atmósfera controlada, diseñada y fabricada por FDM Environment Makers.

Preguntas frecuentes sobre la cámara de cría de insectos

¿Qué especies estándar se crían?

Las especies de referencia para la ecotoxicología regulada están definidas por la EPA y la OCDE. Apis mellifera (abeja melífera): pruebas de la OCDE 213/214/237 para agroquímicos, criadas en colmenas estándar de 5 cuadros con reinas Buckfast o Carnica seleccionadas. Drosophila melanogaster: genética molecular, farmacología, envejecimiento, condiciones 25 °C / 60 % RH / 12 L:12 D, sustrato de agar de harina de maíz. Tribolium castaneum: prueba de plaga de almacenamiento para grano y harina, 30 °C / 70 % RH / oscuridad total, en harina de trigo integral. Spodoptera frugiperda / littoralis: pruebas de lepidópteros para insecticidas agrícolas, criados en una dieta artificial Poitout. Plutella xylostella: resistencia a insecticidas en Brassicaceae. Bombyx mori: investigación y patología del gusano de seda. Nasonia vitripennis: especie de referencia de parasitoides para el biocontrol. Cada especie requiere una cepa certificada (Carolina Biological, Insect Rearing Companies) con identidad genética validada, ausencia de patologías (Nosema, CPV) y un historial de cría documentado de al menos 20 generaciones para garantizar la estabilidad fenotípica.

¿Fotoperiodo y humedad estándar?

Las condiciones ambientales estandarizadas para la cría son específicas de cada especie. Parámetros típicos: Larvas de Apis mellifera : 34 °C / 94 % RH / oscuridad (similar a una incubadora), adultos 25-28 °C / 55-65 % RH. Drosophila : 25 +/- 1 °C / 60 +/- 5 % RH / 12 L:12 D, intensidad lumínica 1000-3000 lux. Lepidópteros nocturnos (Spodoptera, Heliothis): 26 °C / 75 % RH / 16 L:8 D, fase oscura significativa. Insectos agrícolas diurnos (Pieris, Plutella): 22-25 °C / 70 % RH / 16 L:8 D. Producto almacenado de Tribolium : 30 °C / 70 % RH / 0 L:24 D (sensible a la luz). La alta humedad (65-85% RH) es fundamental para prevenir la deshidratación de los huevos y las fases juveniles, pero debe mantenerse en equilibrio para evitar la proliferación de hongos patógenos (Beauveria, Metarhiziumrhy ácaros (Tyrophagus). El fotoperiodo regula la diapausa inducida, la sincronización del apareamiento y los ritmos circadianos. La cámara debe proporcionar fuentes de luz con un espectro similar a la luz natural (LEDs RGB o lámparas fluorescentes T5 de 5000-6500 K), evitando la radiación UV-A excesiva, que puede ser letal para especies sensibles.

¿Cómo se estructura un estudio de LD50?

La prueba de toxicidad aguda LD50 según OECD 213 (oral) u OECD 214 (por contacto) determina la dosis letal para el 50% de la población expuesta. Procedimiento estándar: (1) obtención de abejas jóvenes (1-14 días) de colonias sanas documentadas; (2) anestesia de CO2 para su manipulación; (3) enjaulamiento en grupos de 10 por jaula Liebefeld, 3 réplicas por dosis; (4) exposición a 5-7 dosis geométricas (factor 2) + solución de control negativo + control positivo de dimetoato con LD50 conocida; (5) observación de la mortalidad a las 4, 24, 48, 72 h; (6) dieta ad libitum de solución de azúcar al 50%; (7) análisis probit o binomial para el cálculo de LD50 con un intervalo de confianza del 95%. La validez de la prueba requiere: mortalidad del control < 10 %, LD50 del control positivo de dimetoato dentro del rango esperado (0,10-0,35 μg i.a./abeja por vía oral). La cámara climática debe mantener 25 ± 2 °C / 50-70 % RH / oscuridad (o luz roja para observaciones) durante al menos 96 h, con acceso del operador limitado para evitar perturbaciones. El Reglamento UE 1107/2009 exige la LD50 para el registro de cada nueva sustancia activa + metabolitos, con una reciente extensión a la OCDE 245 crónica.

¿Integración con los polinizadores?

El estudio de polinizadores no Apis tiene cada vez más demanda: Bombus terrestris (abejorro común) – prueba dedicada de la EFSA 2021, colonia estándar con reina y 40-80 obreras, condiciones 25 °C / 60 % RH oscuridad; Osmia bicornis (abeja solitaria) – prueba preliminar de la OCDE 2022, nidos artificiales con capullos que han sobrevivido al invierno; Megachile rotundata – abeja cortadora de hojas estándar para la polinización de la alfalfa; Syrphidae (moscas polinizadoras) – protocolos en desarrollo en el IOBC. La investigación sobre efectos subletales ha dado lugar a nuevos protocolos: pruebas de navegación con etiquetado RFID, aprendizaje del reflejo de extensión de la probóscide (PER), inmunomodulación con cuantificación de hemocitos y microbioma intestinal. Las cámaras dedicadas a la exposición a nivel de colonia (jaula de campaña, laboratorio de campo, semicampo, OCDE 213-extendido) requieren volúmenes de 50 a 500 m³, fotoperiodo natural simulado y la opción de proporcionar plantas de siembra (colza, facelia) para una búsqueda de alimento realista. Presupuesto de inversión: 100-500 000 EUR, duración del estudio: 4-12 semanas, según lo estipulado en el Reglamento de la UE sobre orientación apícola de 2013 (actualmente en revisión en 2024).